- Axial chromatin-free cavities appear in plants with average 2C DNA content exceeded 0.8 pg/染色体
- 染色体の凝縮/脱縮は N. coli の半薄切片で視覚化することができる。 4′,6-ジアミノ-2-フェニルインドール(DAPI)染色後のN. damascena細胞の半薄切片で染色体の凝縮/凝縮を可視化することができる
- 分裂期の染色体凝縮・脱離を5-ethynyl-2′-deoxyuridine (EdU) 組み込み後に解析
- Chromosome condensation/decondensation during mitosis analyzed by electron microscopy
Axial chromatin-free cavities appear in plants with average 2C DNA content exceeded 0.8 pg/染色体
一部の植物の分裂期および終期染色体には、軸方向にクロマチンを含まない空洞があり、これまで調査した多くの植物や動物とは区別される(図1a、b)。 このような染色体構成を示す報告は、私たちの知る限り、ゲノムの大きな植物に限られており、このような形態的な構成は、これらの植物に特有の特徴であると推測される。 そこで、12種の植物について、分裂期と終期の染色体を電子顕微鏡で観察した(表1;図1a、b;追加ファイル1;図S1)。 図1cに示すように、軸方向のクロマチンを含まない空洞は、ゲノムの大きい植物や染色体の大きい植物の染色体内部でのみはっきりと見られたが、平均染色体サイズはこの空洞の有無とよりよい相関があるように思われた。 軸索空洞を持つ植物の中では、オオブタクサが最もゲノムが小さく、染色体あたりの平均2C DNA量も0.79 pgと最も小さかった。 したがって、この染色体構成は、2C DNA量が染色体あたり0.8 pgを超えるとおおよそ推定される植物の染色体の特徴である。
染色体の凝縮/脱縮は N. coli の半薄切片で視覚化することができる。 4′,6-ジアミノ-2-フェニルインドール(DAPI)染色後のN. damascena細胞の半薄切片で染色体の凝縮/凝縮を可視化することができる
植物の染色体研究に最も適した対象である根端分裂組織は、ピンぼけ蛍光のために高解像度画像を取得することができない。 ここでは、LR White培地に埋め込んだ根の半薄切片(200-250nm)を応用した方法を用いた。 この切片の厚さは、共焦点顕微鏡を用いても、光学切片の厚さよりかなり薄い。 異なる分裂段階の細胞を識別できる形態的特徴を見つけるために、DAPIで染色した細胞の形態を分析した。
N. damascenaの染色体組織には、蛍光顕微鏡でも容易に確認できるいくつかの変容が見られた。 前期の核の中には、細い染色体(直径約0.6μm)の一部が見えた(図2a)。 前期の中期には、前期の太い染色体(約1.2μm)が形成され、その内部には、前期の染色体が折りたたまれたものと思われる細い繊維の存在が見分けられました(図2b)。 前期の後半(図2c)、中期(図2d)、後期(図2e)の染色体は密に凝縮しており、内部組織は見いだせなかった。 終期における脱凝縮では、直径約0.4μmのクロマチンファイバーが分離し、染色体の軸領域にクロマチンを含まない空洞が出現し(図2f)、そのサイズは終期において次第に大きくなった(図2g、h)。 また、染色体繊維の直径は、前期の染色体のサイズとほぼ同じであった。 図2
N. damascenaの分裂期染色体の形態。 左と中央のパネルはDAPIで染色した半薄切片の蛍光顕微鏡写真(全体像と断片)、右のパネルは中央のパネルの線を通る密度プロットを示す。 b 前期中期(前期の染色体に相当すると思われる染色体形成繊維を矢頭で示す) c 前期後期 d メタフェーズ e アナフェーズ f テロフェーズ初期(軸方向のクロマチンフリー空洞を矢印で示す、テロフェーズ染色体形成繊維を矢頭で示す) g テロフェーズ後期 h G1相。 スケールバー。 1 μm
分裂期の染色体凝縮・脱離を5-ethynyl-2′-deoxyuridine (EdU) 組み込み後に解析
前期の間に、薄い前期の染色体は厚い後期の染色体へ変化する。 前期の染色体が太くなるのは、前期の染色体が折りたたまれた結果か、あるいは徐々に太くなった結果か、どちらかであろう。 そこで、前期の染色体内部に直線状に存在する染色体フォーカスに印をつけ、前期の凝縮過程での空間的な再配置を解析する必要があった。 図3aに示すように、前期の初期から後期への移行期において、このような病巣は直線的な配置を失うか(折りたたみ)、直線的な配置を保ちながら細いバンド状に伸びる(肥厚)ことが判明した。 染色体領域を標識するために、クリックケミストリーで検出できる合成ヌクレオチドEdUを複製中のクロマチンに組み込んだ。
N. damascenaの根に30分間EdUを取り込み、異なる追跡期間(2〜14時間)の後、染色体の拡散を行なった。 染色体標識のパターンとしては、不連続な領域の標識(パターン1)、染色体腕の標識はあるがセントロメアはない(パターン2)、染色体腕とセントロメアの両方の標識(パターン3)の3つが検出された(図3b)。 パターン1はEdU封入後4時間でより多く観察され、このような標識はS期後半に典型的であることが示された(図3c;追加ファイル2:図S2)。 パターン1の場合、相同染色体の標識は類似しており(Additional file 3: Figure S3)、EdU組み込みのパターンが特異的であることが示された。 S期の残りの期間では染色体腕が標識されていたが(パターン2、3)、S期の初期と後期のほぼ境界で染色体中心領域も標識された(パターン3)(図3c)
複製後期クロマチンが標識された染色体(パターン3)を用いて前期から後期への遷移を解析した。 前期の染色体では、標識領域は細い染色体に沿って直線的に分布していた(図4a)。 前期の染色体に比べて約2倍の太さの後期染色体では、標識領域は直線的な分布を失っていた(図4b)。 前期の染色体は2本の染色体からなり、徐々に分離していくため、直線的な分布が失われる可能性があるため、この観察は完全には有効ではありません。 そこで、アナフェース染色体(染色体分離後に完全にコンパクトになった染色体)について、さらに解析を行った。 前期の染色体の直径とほぼ同じ直径を持つアナフェース染色体では、標識されたクロマチン領域は直線的に配置されておらず、染色体の体積全体に分布していた(図4c)。 また、染色体軸方向にはクロマチンのない空洞が認められ、標識領域が直線的に配置されたクロマチンファイバーが検出された(図4d)。 したがって、前期の染色体が後期に移行する間に、前期の染色体が折り畳まれたのである。 8003>
Chromosome condensation/decondensation during mitosis analyzed by electron microscopy
光学顕微鏡で説明したクロマチン線維の折りたたみの内部組織の検出のために、電子顕微鏡を使用した。
間期核は234±49nm(平均±S.D.)の太い繊維の網目で満たされており(図5a)、これは他で述べたように「間期クロモネマタ」と呼ばれるかもしれない . 電子顕微鏡では、前期の染色体凝縮の3つの段階を検出することができた。そのうちの最も早い段階は、光学顕微鏡では検出できなかったので、ここでは「前段階」と呼ぶことにする。 8003>
テロフェイズ後期(図6c)とG1期(図6b)において、染色体繊維を観察した。 6d)、染色体は娘核内で染色体ドメインに凝縮され、容易に観察することができなくなった。 しかし、分離した染色体断片を確認することは可能であった。 このとき、染色体は直径約250 nmの繊維状になっており、これは間期の染色体の直径とほぼ一致する。 この観察に加え、染色体繊維の消失は、有糸分裂のこの段階で、クロマチン繊維が再折り畳まれ、凝縮したクロマチンの間期複合体を形成していることを示唆した
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